Pro-Test Italia

10 farmaci (tra i tanti) degli ultimi 10 anni per i quali la sperimentazione animale è stata indispensabile

Ci vengono sottoposte le nuove affermazioni via Facebook19 della Senatrice Fucksia:

Discorsi lunghi e complessi, che richiedono più tempo e spazio di un post sommario via facebook o un breve intervento in aula mirato più al senso delle scelte politiche che alla trattazione accademica. Mi auguro che ci siano occasioni giuste per farlo e soprattutto un impegno a cambiare in meglio. Un buon punto di partenza potrebbe essere quello di elencare ad es. le nuove molecole farmacologiche fondamentali per la salute immesse negli ultimi 10 anni che hanno trovato indispensabile la sperimentazione animale.

Noi di Pro-Test Italia non ci tiriamo indietro, e rispondiamo nuovamente

Tutti i farmaci prima di entrare in commercio devono essere testati su animali, quindi la domanda potrebbe semplicemente tradursi in “elencare dieci farmaci approvati negli ultimi dieci anni”. Il che è abbastanza facile. Ma si può anche tracciare qualche genealogia più precisa del ruolo svolto dalla ricerca in vivo in fase preclinica.

Antitumorali inibitori delle tirosina chinasi
Già questi sono più di dieci. Nascono con la scoperta dell’Imatinib, che ha aperto la strada a tutti i successori. L’identificazione del target terapeuticodell’Imatinib, la proteina BCR-ABL, ha richiesto l’utilizzo sia di studi in vitro che di transgenesi su animali1,2,5,8,11,14.
Ceftaroline
Nuovo antibiotico ad ampio spettro. Studiato fra gli altri sui conigli6.
Icatibant
Farmaco peptidomimetico per il trattamento dell’angiodema ereditario. L’identificazione del target terapeutico (Bradichinina 2) si è avvalsa del contributo indispensabile di studi su animali3,16.
Anascorp
Antidoto contro il veleno degli scorpioni americani del genere Centruroides. Non sarà la sconfitta del cancro, ma ha salvato già delle vite. Come molti antidoti a veleni di origine animale, si produce da cavalli immunizzati.18
Telaprevir e Boceprevir
Antivirali attivi contro l’epatite C. Studiati preliminarmente su tessuti e animali10,13.
Betalacept
Inibitore del rigetto nel trapianto di reni, la sua efficacia è stata verificata in fase preclinica su macachi9.
Dabitragan
Anticoagulante particolarmente efficace per diminuire il rischio di infarto, la forma attuale è stata selezionata attraverso studi su varie specie animali4,12.
Fidaxomicina
Antibiotico contro l’infeziona da Clostridium difficile. Studi preclinici svolti su topi e ratti15.
Adalimumab
Approvato per il trattamento dell’artrite reumatoide, del morbo di Chron e varie altre patologie. La sua efficacia fu verificata su un modello animale transgenico7.
Eribulina Mesilato
Farmaco anticancro efficace nel trattamento del cancro metastatico della mammella, testato attraverso xenotrapianti su topi nudi17.

  1. G. Q. Daley, R. A. Van Etten, and D. Baltimore, ‘Induction of Chronic Myelogenous Leukemia in Mice by the P210bcr/Abl Gene of the Philadelphia Chromosome’, Science, 247 (1990), 824-30.
  2. B. J. Druker, M. Talpaz, D. J. Resta, B. Peng, E. Buchdunger, J. M. Ford, N. B. Lydon, H. Kantarjian, R. Capdeville, S. Ohno-Jones, and C. L. Sawyers, ‘Efficacy and Safety of a Specific Inhibitor of the Bcr-Abl Tyrosine Kinase in Chronic Myeloid Leukemia’, N Engl J Med, 344 (2001), 1031-7.
  3. E. D. Han, R. C. MacFarlane, A. N. Mulligan, J. Scafidi, and A. E. Davis, 3rd, ‘Increased Vascular Permeability in C1 Inhibitor-Deficient Mice Mediated by the Bradykinin Type 2 Receptor’, J Clin Invest, 109 (2002), 1057-63.
  4. N. H. Hauel, H. Nar, H. Priepke, U. Ries, J. M. Stassen, and W. Wienen, ‘Structure-Based Design of Novel Potent Nonpeptide Thrombin Inhibitors’, J Med Chem, 45 (2002), 1757-66.
  5. N. Heisterkamp, G. Jenster, J. ten Hoeve, D. Zovich, P. K. Pattengale, and J. Groffen, ‘Acute Leukaemia in Bcr/Abl Transgenic Mice’, Nature, 344 (1990), 251-3.
  6. C. Jacqueline, J. Caillon, V. Le Mabecque, A. F. Miegeville, A. Hamel, D. Bugnon, J. Y. Ge, and G. Potel, ‘In Vivo Efficacy of Ceftaroline (Ppi-0903), a New Broad-Spectrum Cephalosporin, Compared with Linezolid and Vancomycin against Methicillin-Resistant and Vancomycin-Intermediate Staphylococcus Aureus in a Rabbit Endocarditis Model’, Antimicrob Agents Chemother, 51 (2007), 3397-400.
  7. J. Keffer, L. Probert, H. Cazlaris, S. Georgopoulos, E. Kaslaris, D. Kioussis, and G. Kollias, ‘Transgenic Mice Expressing Human Tumour Necrosis Factor: A Predictive Genetic Model of Arthritis’, EMBO J, 10 (1991), 4025-31.
  8. M. A. Kelliher, J. McLaughlin, O. N. Witte, and N. Rosenberg, ‘Induction of a Chronic Myelogenous Leukemia-Like Syndrome in Mice with V-Abl and Bcr/Abl’, Proc Natl Acad Sci U S A, 87 (1990), 6649-53.
  9. A. D. Kirk, D. M. Harlan, N. N. Armstrong, T. A. Davis, Y. Dong, G. S. Gray, X. Hong, D. Thomas, J. H. Fechner, Jr., and S. J. Knechtle, ‘Ctla4-Ig and Anti-Cd40 Ligand Prevent Renal Allograft Rejection in Primates’, Proc Natl Acad Sci U S A, 94 (1997), 8789-94.
  10. C. Lin, A. D. Kwong, and R. B. Perni, ‘Discovery and Development of Vx-950, a Novel, Covalent, and Reversible Inhibitor of Hepatitis C Virus Ns3.4a Serine Protease’, Infect Disord Drug Targets, 6 (2006), 3-16.
  11. T. G. Lugo, A. M. Pendergast, A. J. Muller, and O. N. Witte, ‘Tyrosine Kinase Activity and Transformation Potency of Bcr-Abl Oncogene Products’, Science, 247 (1990), 1079-82.
  12. S. H. McKellar, S. Abel, C. L. Camp, R. M. Suri, M. H. Ereth, and H. V. Schaff, ‘Effectiveness of Dabigatran Etexilate for Thromboprophylaxis of Mechanical Heart Valves’, J Thorac Cardiovasc Surg, 141 (2011), 1410-6.
  13. F. G. Njoroge, K. X. Chen, N. Y. Shih, and J. J. Piwinski, ‘Challenges in Modern Drug Discovery: A Case Study of Boceprevir, an Hcv Protease Inhibitor for the Treatment of Hepatitis C Virus Infection’, Acc Chem Res, 41 (2008), 50-9.
  14. W. S. Pear, J. P. Miller, L. Xu, J. C. Pui, B. Soffer, R. C. Quackenbush, A. M. Pendergast, R. Bronson, J. C. Aster, M. L. Scott, and D. Baltimore, ‘Efficient and Rapid Induction of a Chronic Myelogenous Leukemia-Like Myeloproliferative Disease in Mice Receiving P210 Bcr/Abl-Transduced Bone Marrow’, Blood, 92 (1998), 3780-92.
  15. A. Srivastava, M. Talaue, S. Liu, D. Degen, R. Y. Ebright, E. Sineva, A. Chakraborty, S. Y. Druzhinin, S. Chatterjee, J. Mukhopadhyay, Y. W. Ebright, A. Zozula, J. Shen, S. Sengupta, R. R. Niedfeldt, C. Xin, T. Kaneko, H. Irschik, R. Jansen, S. Donadio, N. Connell, and R. H. Ebright, ‘New Target for Inhibition of Bacterial Rna Polymerase: ‘Switch Region”, Curr Opin Microbiol, 14 (2011), 532-43.
  16. C. J. Strang, H. S. Auerbach, and F. S. Rosen, ‘C1s-Induced Vascular Permeability in C2-Deficient Guinea Pigs’, J Immunol, 137 (1986), 631-5.
  17. Murray J. Towle, Kathleen A. Salvato, Jacqueline Budrow, Bruce F. Wels, Galina Kuznetsov, Kimberley K. Aalfs, Susan Welsh, Wanjun Zheng, Boris M. Seletsky, Monica H. Palme, Gregory J. Habgood, Lori A. Singer, Lucian V. DiPietro, Yuan Wang, Jack J. Chen, David A. Quincy, Ashley Davis, Kentaro Yoshimatsu, Yoshito Kishi, Melvin J. Yu, and Bruce A. Littlefield, ‘In Vitro and in Vivo Anticancer Activities of Synthetic Macrocyclic Ketone Analogues of Halichondrin B’, Cancer Res, 61 (2001), 1013-21.
  18. http://www.anascorp-us.com/resources/Expanded%20Brochure.pdf
  19. https://www.facebook.com/permalink.php?story_fbid=472792922812649&id=400904416668167

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